Будь умным!


У вас вопросы?
У нас ответы:) SamZan.ru

Определение диспансеризации животных

Работа добавлена на сайт samzan.ru: 2015-07-10


PAGE  1

Диспансеризация животных.

План занятия:

1. Определение диспансеризации животных.

2.Методика проведения диспансеризации по внутренним незаразным болезням животных.

2.1.  Принцип метода. 

2.2.  Контрольные дворы   (фермы,      секции).   

2.3. Контрольные группы животных. 

2.4. Сроки проведения диспансеризации. 

2.5. Анализ   производственных    показателей   по  животноводству и ветеринарии (синдроматика стада).     

2.6.   Ветеринарный    осмотр    животных.  

2.7. Клиническое обследование контрольных групп животных. 

2.8. Исследования крови, мочи, молока, рубцового содержимого.

2.9. Анализ кормления и содержания животных.

2.10. Зоогигиеническая оценка ферм.

2.11. Анализ полученных данных.

        

1. Определение диспансеризации животных.

Диспансеризация - система плановых диагностических, профилактических и лечебных мероприятий, направленных на создание здоровых высокопродуктивных стад животных, уменьшение и ликвидацию внутренних незаразных, акушерско-гинекологических, хирургических и других болезней.

Это прогрессивная форма ветеринарного обслуживания, позволяющая осуществлять контроль за состоянием обмена веществ у животных в целом по стаду, своевременно выявлять субклинические формы болезней, разобраться в сложном комплексе причин, вызывающих их, намечать пути профилактики и лечения.

Результаты диспансеризации позволяют активно влиять на технологию животноводства, совместно с агрономической, зоотехнической и другими службами участвовать в создании биологически полноценной кормовой базы, отвечающей особенностям обмена веществ и уровню стабильной высоко продуктивности животных - необходимого условия научно-технического прогресса в животноводстве и ветеринарии.

На промышленных комплексах и крупных специализированных фермах диспансеризация должна проводиться систематически, быть составной частью технологического процесса. Однако она не может заменить повседневной ветеринарной работы, противоэпизоотических мероприятий.

Диспансеризацию животных проводят ветеринарные специалисты хозяйств с участием зоотехников, агрономов, управляющих, начальников цехов, бригадиров ферм.

Лабораторные исследования крови, рубцового содержимого и других биологических субстратов осуществляют ветеринарные лаборатории.

Химический состав кормов определяют агрохимлаборатории, качество кормов - ветлаборатории.

2.Методика проведения диспансеризации по внутренним незаразным болезням животных

2.1.  Принцип метода. 

В основу методики диспансеризации животных при внутренних незаразных    болезнях,    включая алиментарные и эндокринные болезни, положены принципы выборочной    совокупности и непрерывности. Первый достигается путем обследования контрольных ферм   (дворов, секций)  и контрольных    групп животных, второй - благодаря проведению    основной, наиболее    полной, и промежуточной (текущей)   диспансеризации    без  значительного  увеличения общего объема исследований.

2.2.  Контрольные дворы   (фермы,      секции).   

определяют главный ветеринарный врач и главный зоотехник хозяйства, где должны быть такие же условия кормления и содержания животных, как и на смежных дворах (фермах).

2.3. Контрольные группы животных. 

подбирают ветеринарные специалисты, которые проводят диспансеризацию с учетом возраста и физиологического состояния.

При диспансеризации молочных коров и нетелей выделяют четыре контрольных группы: 1) коровы в первые три месяца лактации; 2) коровы 6—7 месяцев лактации; 3) сухостойные животные; 4) нетели за 2 - 3 месяца до отела.

На промышленных комплексах по интенсивному выращиванию и откорму бычков контрольными группами служа животные первого, второго и третьего периодов выращивания и откорма.

При диспансеризации свиней контрольными группами являются супоросные свиноматки, холостые свиноматки и хряки-производители.

При диспансеризации овец группами контроля являются суягные овцематки, подсосные овцематки, бараны-производители.

На племенных фермах, конезаводах и ипподромах диспансеризуют жеребых кобыл, подсосных конематок, жеребцов-производителей, жеребят в возрасте 6, 12, 24, 36 месяцев.

На станциях, племобъединениях и других животноводческих фермах при небольшом поголовье диспансеризуют всех животных, при большом – выделяют контрольные группы по возрастному принципу.

Необходимость  такого    принципа    отбора    контрольных  групп животных    вызвана тем,  что    клинико-биохимические показатели зависят от физиологического состояния ,периода выращивания и откорма.

При очередной диспансеризации контрольные группы животных подбирают вновь.

          2.4. Сроки проведения диспансеризации. 

          Диспансеризацию делят на основную и текущую. Основную проводят раз в год (январь - февраль), текущую - раз в квартал.

          Основная диспансеризация включает анализ производственных показателей по животноводству и ветеринарии, ветеринарный осмотр животных, клиническое обследование контрольных групп, исследование их крови, мочи, молока; анализ кормления и содержания скота, анализ полученных данных, заключение и предложения, мероприятия по профилактике и лечению.

           При текущей (промежуточной) диспансеризации проводят ветеринарный осмотр всех животных, исследуют мочу и молоко от контрольных групп (кровь - по усмотрению врача), анализируют рационы, полученные данные, дают заключение и предложения, намечают мероприятия по профилактике.

           На крупных фермах проводят полное клиническое обследование 10-20% поголовья коров и нетелей, исследование мочи - у 10-20%, крови - 5%, молока тех коров, у которых в моче обнаружены ацетоновые тела.

          Выделяют три основных этапа проведения диспансеризации:

          - диагностичекий;

          - профилактический;

          - лечебный.

         В диагностическом этапе проводят:

         2.5. Анализ   производственных    показателей   по  животноводству и ветеринарии (синдроматика стада).                

         Анализируют молочную продуктивность, затраты коров на единицу продукции, заболеваемость скота незаразными и заразными болезнями, выход телят на 100 коров, их потери (падеж, вынужденный убой, мертворожденность), учитывают массу новорожденных телят, степень выбраковки коров и др.

         Анализ этих показателей следует проводить в динамике, за ряд предыдущих лет. Он дает представление об общем состоянии фермы, стада, наиболее вероятной причине нарушения обмена веществ и других болезней животных.

         2.6.   Ветеринарный    осмотр    животных.  

         При    проведении основной  и  промежуточных     диспансеризаций  на  контрольных  фермах   (дворах,   секциях)   проводят  ветеринарный  осмотр всех животных.

         При поголовном осмотре обращают внимание на общее состояние, упитанность, состояние шерстного покрова, венчика, копытного рога и костяка, реакцию при вставании и т. д. Хорошее общее состояние, живая быстрая реакция на оклик, блестящий шерстный покров, средняя упитанность характерны для здоровых животных. Матовость шерстного покрова и глазури копытного рога, заломы рогового башмака, дистрофия или ожирение, болезненность при вставании, движении, хруст в суставах, провислость спины и слабость костяка являются свидетельством патологии обмена веществ у животных.

         2.7. Клиническое обследование контрольных групп животных. 

         Для того чтобы иметь представление о клиническом статусе в стаде при проведении основной диспансеризации, осуществляют полное клиническое обследование контрольных групп животных. Определяют упитанность, состояние лимфоузлов, частоту сердечных сокращений, характер сердечных тонов, частоту и глубину дыхания, ритм и силу сокращения рубца, состояние печени, костяка, органов движения, вымени и мочеполовых органов. Исследуют предлопаточные лимфоузлы и лимфоузлы коленной складки. При их увеличении животных исследуют на лейкоз в соответствии с существующей инструкцией.

         Состояние сердечной деятельности определяют путем аускультации сердца, устанавливая частоту, силу и ритм сердечных сокращений, усиление, ослабление сердечных тонов, расщепление или раздвоение их, шумы сердца и др. При кетозе отмечают преимущественно учащение сердечных сокращений, ослабление, глухость, расщепление, раздвоение сердечных тонов.

         Состояние органов дыхания оценивают первоначально по частоте и глубине дыхания, при наличии каких-либо признаков патологии проводят дополнительные исследования. Частоту дыхания подсчитывают при спокойном состоянии животного. Наличие большого числа животных с учащенным поверхностным дыханием свидетельствует о патологии обмена, веществ.

         На фермах, где отмечают кетоз, хронический ацидоз рубца, учащенное поверхностное дыхание бывает у 20 - 25% животных.

         У высокопродуктивных коров нередко констатируют хронические бронхиты, очаговые пневмонии, альвеолярную эмфизему легких и другие болезни органов дыхания.

         Первоначальное представление о состоянии желудочно-кишечного тракта дают результаты исследования рубца. Частоту движений рубца подсчитывают за 2 мин. При установлении редких или частых слабых, неритмичных сокращений рубца исследуют книжку, сычуг, сетку, чтобы выявить первичную причину гипотонии, атонии или гипертонии предже-луд'ков. Важно исключить травматический ретикулит, ретикулоперитонит, закупорки книжки и другие первичные заболевания преджелудков.

         Частые случаи гипотонии и атонии преджелудков у коров встречаются при ацидозе рубца, остеодистрофии и гипокобальтозе. Нередко они проявляются при кетозе, а также резком переводе животных с одного вида корма на другой.

          Печень животного исследуют пальпацией и перкуссией области печеночного притупления. При значительных патологических процессах в печени область ее притупления увеличивается в каудальном направлении, доходя до линии седалищного бугра до 13-го ребра, и опускается краниовентрально. Увеличение печени встречается преимущественно у животных при высококонцентратном, силосно-бардяном, силосно-жомовом типах кормления.

          Для оценки состояния костяка исследуют последние хвостовые позвонки, ребра, поперечные отростки поясничных позвонков и других костей. В случаях расстройства минерального обмена, обеднения костяка солями кальция, фосфора, магния у животных обнаруживают истончение и рассасывание последних хвостовых позвонков, ребер, лопатки и других костей. На ребрах, маклоке и других костях устанавливают фиброзные утолщения, иногда величиной с кулак, деформацию грудной клетки.

           При исследовании органов движения обращают внимание на наличие хромоты, состояние суставов, венчика, копытец. Частые случаи деформации копытцевого рога, воспаления венчика, бурситов, артритов могут быть следствием нарушения обмена веществ у животных.

           При исследовании мочеполовых органов осматривают область подгрудка, нижнюю часть живота и другие участки тела животного с тем, чтобы выявить отеки, определяют чувствительность почек. Осматривают область таза, крупа и вульвы с целью обнаружения истечений из наружных половых органов и установления вагинитов, эндометритов, метритов, задержаний последа и других болезней.

         Клинические формы маститов выявляют осмотром и пальпацией молочной железы, обнаружением хлопьев и сгустков в молоке (секрете) при пробном сдаивании на фильтровальную бумагу.

          Результаты клинического исследования записывают в специальный журнал или диспансерную карту.

         2.8. Исследования крови, мочи, молока, рубцового содержимого.                                      Для того чтобы иметь наиболее полное представление об уровне и состоянии обмена веществ, необходимо провести лабораторные    исследования    крови, мочи    и молока, а в ряде случаев и рубцового содержимого.

         2.8.1. Исследование крови. При основной и промежуточной диспансеризации перед взятием крови проводят полное клиническое обследование животных. Кровь берут от клинически здоровых животных, не имеющих признаков травматического ретикулита, перикардита, гнойного мастита, эндометрита, задержания последа и других первичных заболеваний органов и систем, которые могут оказать влияние на показатели крови. На фермах с однотипным кормлением кровь берут от 20-30 животных контрольных групп (по 5-7 животных в каждой группе).

         2.8.1.1. Кровь для исследования берут утром в 2 сухие чистые пробирки: в одну для получения цельной крови, в другую для получения сыворотки. В пробирку для получения цельной крови или плазмы предварительно вносят противосвертывающее средство (антикоагулянт).

        В расчете на 10 мл крови берут 10-20 мг лимоннокислого или щавелевокислого натрия, 2-3 капли 1%-ного раствора гепарина (1-2 мг, или 50 ед.), 10-15 капель 10%-ного раствора этилендиаминтетрауксусной кислоты натриевой соли (ЭДТА-натрия, трилон Б). Добавление указанных выше средств в больших количествах недопустимо, так как их высокая концентрация вызывает в крови различные изменения - до гемолиза.включительно.

         Кровь отправляют в лабораторию в день ее взятия. Исследование проводят по единым унифицированным методикам.

         При пересылке на исследование крови в лабораторию ветеринарный врач или фельдшер составляет список животных с обязательным указанием, от какой контрольной группы или в какой физиологической фазе находятся животные.

         Перечень исследуемых показателей крови зависит от характера предполагаемой патологии, а также от возможностей лаборатории.

         2.8.1.2.  Перед  анализами   сыворотку    крови  центрифугируют в течение 10 мин при 3000 об/мин, чтобы удалить форменные элементы крови, которые искажают результаты исследования.

         2.8.1.3.  Общими  показателями  при  проведении диспансеризации являются гемоглобин, число лейкоцитов, резервная щелочность. общий белок сыворотки крови,  общий  кальций, неорганический фосфор, каротин, специфическими - кетоновые тела, сахар, магний, сулемовая или другая печеночная пробы, микроэлементы, витамины А, С, Е и др.

          Определение кетоновых тел и сахара в крови служит для диагностики кетоза, магния - для диагностики гипомагниемии, сулемовая проба - для определения функций печени; микроэлементов и витаминов - в целях обнаружения недостаточности их в организме животного.

           2.8.1.4. Гемоглобин крови определяют гемоглобинцианидным методом. Снижение уровня гемоглобина бывает при неполноценном кормлении, недостатке в рационах белка, минеральных и других веществ, при плохих зоогигиенических условиях содержания (темные, сырые, плохо вентилируемые помещения), хронических токсикозах. Это особенно ярко проявляется при патологии обмена веществ, связанной с недостатком кобальта, железа, меди и витамина В12. Низкий уровень гемоглобина крови обнаруживают при кетозе, поражении печени, нитратно-нитритном токсикозе.

         2.8.1.5.   Количество   лейкоцитов    определяют  с  помощью счетных камер или автоматических счетчиков.

         2.8.1.6. Общий белок сыворотки крови определяют с помощью рефрактометра или биуретовьгм методом.

          В организме животных концентрация общего белка сыворотки крови находится в довольно постоянных пределах и изменяется при глубокой патологии обмена веществ, заболевании печени и других органов. Снижение общего белка сыворотки крови (гипопротеинемия) отмечается при длительном недокорме, алиментарной остеодистрофии, плохом усвоении белков корма, вследствие хронических расстройств желудочно-кишечного тракта, недостатка лимитирующих аминокислот, макро- и микроэлементов, витаминов. К гипопротеинемии приводят большие потери белка при нефрозах и нефритах, а также снижение его синтеза при циррозах печени. Повышение общего белка сыворотки крови (гиперпротеинемия) в условиях интенсивного ведения животноводства бывает значительно чаще, чем гипопротеинемия.

        Причиной гиперпротеинемии могут быть белковый перекорм, острые гепатиты, дистрофии и другие болезни печени. При этом количество общего белка сыворотки крови повышается за счет высокомолекулярных, крупнодисперсных фракций его - глобулинов при одновременном снижении уровня альбуминов. У высокопродуктивных коров количество общего белка сыворотки крови повышается чаще при кетозе и осложнении его вторичной остеодистрофией.

        Содержание общего белка сыворотки крови у коров в летний период при использовании долголетних культурных пастбищ выше, чем зимой; у высокопродуктивных коров выше, чем у низкопродуктивных. Уровень его перед отелом несколько снижается, но названные изменения не выходят за пределы нормы. Говорят о гипопротеинемии, если уровень общего белка сыворотки крови ниже 7,2 г%, гиперпротеинемии - выше 8,6 г%.

         У молодых животных уровень общего белка сыворотки крови несколько ниже, чем у взрослых.

         2.8.1.7. Резервную щелочность плазмы крови определяют диффузионным методом с помощью сдвоенных колб по Кондрахину И.П.

         В организме животных постоянство кислотно-щелочного равновесия (рН) поддерживается четырьмя основными буферными системами: гемоглобиновой, бикарбонатной, фосфатной, белковой. В клинической практике большое значение придаётся бикарбонатной буферной системе, так как она наиболее лабильна и быстрее других систем реагирует на различные сдвиги в организме. Состояние бикарбонатной буферной системы оценивают по определению резервной щелочности (запасов бикарбонатов) плазмы крови.

        Величина резервной щелочности крови измеряется количеством углекислого газа (мл), выделенного из 100 мл плазмы крови, и выражается в объездных процентах об.% С02 или в мл СО2  на 100 мл плазмы крови.

        В ветеринарной практике часто встречаются с явлением компенсированного метаболического ацидоза, проявляющегося в снижении резервной щелочности крови вследствие поступления в организм избытка кислых (фосфор, хлор, сера) и недостатка щелочных (натрий, кальций, калий, магний) элементов, кормления преимущественно концентратами или кислыми кормами (жом, барда, силос). Снижение резервной щелочности крови происходит при ацидозе рубца, кетозе, остеодистрофии и других формах нарушения обмена веществ. Состояние компенсированного ацидоза часто отмечают в стойловый период, когда в организме животных накапливается большое количество недоокисленных продуктов обмена, кислот, которые связывают бикарбонаты и другие щелочные компоненты крови.

Резервная щелочность снижается при расстройствах желудочно-кишечного тракта, нефритах, а также септических процессах, вследствие выведения из организма большого количества натрия.

         2.8.1.8. Кальций в крови находится в виде ионов и в связанном с белками состоянии. Общий кальций определяют комплексонометрическим методом с индикатором флюорексоном или мурексидом.

         Снижение уровня кальция в крови отмечается при длительном недостаточном поступлении его с кормом и водой и плохом усвоении вследствие дефицита витамина Д, болезней желудочно-кишечного тракта, нарушении оптимального соотношения кальция и фосфора.

         Гипокальциемия наступает при остеодистрофии, пастбищной тетании, послеродовом парезе, нарушении функций щитовидной и паращитовидных желез, заболеваниях печени (уменьшается всасывание кальция в кишечнике), а также при повышении концентрации в крови фосфора, нарушении соотношения между этими элементами).

         При уменьшении содержания кальция в крови до 7 мг°/о у животных наступают нервные расстройства (тетания, судороги).

         Повышение уровня кальция в крови может быть при передозировке витамина Д, острых панкреатитах. При гиперфункции паращитовидных желез содержание кальция в крови увеличивается, а фосфора уменьшается из-за усиленного выделения его с мочой.

         2.8.1.9. Неорганический фосфор сыворотки крови определяют с ванадат-молибденовым реактивом.

         При хранении сыворотки крови количество неорганического фосфора увеличивается за счет расщепления его органических соединений, поэтому кровь сразу после взятия рекомендуется осаждать равным объемом 20%-ной ТХУ и исследовать фильтрат. Безбелковый фильтрат в закрытых пробирках в холодильнике можно хранить 5-7 дней.

         Снижение уровня неорганического фосфора в крови (гипофосфатемия) отмечается при недостатке этого элемента в кормах, плохом его усвоении вследствие заболеваний желудочно-кишечного тракта или печени, нарушения соотношения кальция и фосфора в кормах.

         Гипофосфатемию наблюдают при остеодистрофии, однако уменьшение количества фосфора в крови не всегда совпадает во времени с клинической картиной этого заболевания. В начальный период заболевания, когда костяк еще богат запасами солей фосфора, гипофосфатемии может не быть.

        Гиперфосфатемия наступает при гиперфункции паращитовидных желез, нефритах, нефрозах, мышечном перенапряжении. В хозяйствах с.высококонцентратным типом кормления коров отмечается повышение уровня неорганического фосфора в крови.

        Важное диагностическое значение имеет соотношение в крови кальция и фосфора. У здоровых животных при нормальном уровне обмена веществ этот коэффициент равен 1,0-2,0. Повышение этого показателя более 3 (или снижение менее 1,5) указывает на патологию фосфорно-калъциевого обмена.

         2.8.1.10.  Неорганический магний сыворотки крови определяют по цветной реакции с титановым желтым или с магоном. Снижение магния в крови отмечается при пастбищной тетании (до 1,5-1,2 мг% и ниже), алиментарной остеодистрофии, послеродовом парезе, транспортной болезни у коров. Гипомагниемия наступает вследствие поступления в организм избытка калия (с молодой травой) или азота.

         2.8.1.11.  Сахар   (глюкозу)   крови определяют по цветной реакции с ортолуидином, глюкозооксидазным методом. Концентрация    сахара в крови быстро снижается вследствие распада глюкозы   (гликолиза),    поэтому сразу после взятия крови    необходимо    приготовить из нее безбелковый фильтрат.

          В безбелковом фильтрате, хранящемся в холодильнике в закрытых пробирках, глюкозу можно исследовать в течение 3-5 дней.

         Снижение уровня сахара в крови (гипогликемия) бывает при кетозе, вторичной остеодистрофии и некоторых других болезнях обмена веществ, а также поражениях печени из-за токсикоза. Значительную гипогликемию у коров отмечают в первые дни после отела вследствие большого расхода энергии при родах.

         Наиболее часто снижение уровня сахара в крови является следствием дефицита легкоусвояемых углеводов в кормах, избыточного потребления глюкозы организмом при высоко-концентратном типе кормления, преобладании в рационах кислых кормов, содержащих в большом количестве уксусную и масляную кислоты.

         Повышение содержания сахара в крови (гипергликемия) может быть стойким или непродолжительным. Непродолжительная гипергликемия бывает при скармливании скоту больших количеств сахаристых кормов, а также при испуге, высокой температуре, стрессовом состоянии. Стойкая гипергликемия наблюдается при сахарном диабете вследствие гиперфункции островковой ткани поджелудочной железы, продуцирующей инсулин и переводящей сахар в гликоген. Незначительная гипергликемия бывает при ацидозе рубца.

          2.8.1.12. Кетоновые тела (бета-оксимасляная кислота, ацетоуксусная кислота и ацетон) являются промежуточными продуктами обмена жиров, углеводов и белков.

          Количественное определение кетоновых тел в крови в ветеринарной практике преимущественно проводят йодометрическим методом. Обнаружить кетоновые тела в сыворотке крови можно с помощью реактива Лестраде и реактивных полосок. Чувствительность реакции - около 10 мг% ацетона и ацетоуксусной кислоты или около 25 мг% и более общего количества кетоновых тел.

         У здоровых коров в цельной крови общее количество кетоновых тел составляет 1-6 мг%, причем на долю бета-оксимасляной кислоты их приходится в 3-4 раза больше, чем ацетона и ацетоуксусной кислоты. При кетозе соотношение меняется в сторону увеличения ацетона и ацетоуксусной кислоты.                                                                                         

         Наибольшая концентрация кетоновых тел в крови у здоровых животных бывает в первые 3 месяца лактации и последний месяц стельности.           У высокопродуктивных коров концентрация кетоновых тел в крови выше, чем у низкопродуктивных.

        Стойкое повышение кетоновых тел в крови (гиперкетонемия) встречается при кетозе, достигая 25 мг% и выше. Наибольшая их концентрация бывает в начальный период заболевания; при хроническом течении, потере аппетита и проявлении признаков вторичной остеодистрофии содержание в крови кетоновых тел - в пределах нормы или немного выше ее. При развитии вторичной остеодистрофии вследствие кетоза кетонурию не выявляют.

         Повышение уровня кетоновых тел в крови наступает при усиленном распаде жиров, в фазе интенсивной лактации, при гиперфункции щитовидной и поджелудочной железы.

        Причиной гиперкетонемии может быть скармливание животным большого количества силоса, сенажа, кислого жома и других кормов, содержащих в избытке уксусную и масляную кислоты. Накоплению в крови кетоновых тел способствует высокая концентрация аммиака, который тормозит реакцию окисления ацетил-КоА в цикле трикарбоновых кислот.

Умеренная вторичная кетонемия может быть при травматическом перикардите, ретикулоперитоните, эндометрите, задержании последа, хирургической инфекции и других септических процессах. Вторичная кетонемия (кетонурия) носит нестойкий характер и исчезает с устранением основного заболевания.

         2.8.1.13. Определяют каротин в сыворотке крови колориметрическим методом с использованием эфира или бензина.

         Витамин А в сыворотке крови определяют по методике Бессея в модификации А. А. Анисовой, витамин Е - по Биеру в модификации Р. Ш. Киселевич и С. И. Скварко, витамин С - по Климову. Снижение содержания в крови витаминов - признак развития гиповитаминозов.

          В случае необходимости определяют мочевину в сыворотке крови по цветной реакции с диацетилмонооксимом, или уреазным, натрий и калий в плазме крови - на пламенном фотометре, йод в сыворотке крови - по Драгомировой, медь, цинк, кобальт, марганец в цельной крови - фотометре.            Для характеристики липидного обмена определяют триглицериды по реакции с ацетилацетоном после экстракции смесью гептана и изопропилового спирта, холестерин - по Ильку и другие вещества.

          2.8.2. Исследование мочи. При диспансеризации животных исследованию мочи придают большое значение, т. к. в моче в ряде случаев можно установить патологические сдвиги, связанные с нарушением обмена веществ, а также с развитием других болезней.

          Исследуют мочу от 10 - 20% животных контрольных групп (по 15 - 20 голов в группе). Для исследования подбирают животных, не имеющих клинических признаков эндометрита, тяжелого, клинически выраженного мастита, задержания последа, травматического ретикулита, атонии пред-желудков.

          Мочу исследуют непосредственно на ферме, определяя реакцию (рН), наличие ацетоновых (кетоновых) тел, белок, билирубин, уробилиноген и др.

вещества. Для анализа используют мочу, взятую в утренние часы.

         Собирают мочу при самопроизвольном мочеиспускании или побуждают животных к мочеиспусканию легким массажем в области вентральной части половых губ вблизи клитора.

         2.8.2.1. Определение реакции мочи (рН). Реакцию мочи чаще определяют с помощью универсальной индикаторной бумаги или реактивных (диагностических) полосок сразу после взятия образцов, так как при стоянии она ощелачивается вследствие образования карбоната аммония.

У здоровых коров рН мочи колеблется в пределах 7,0 — 8,6. Сдвиг реакции мочи в кислую сторону наступает при ацидотическом состоянии в организме, вызванном содержанием животных на рационах с преобладанием в них концентратов или кислых кормов. Сдвиг рН мочи в кислую сторону отмечается при кетозе, ацидозе рубца, воспалительных процессах в желудочно-кишечном тракте, пневмониях и некоторых других воспалительных процессах.

          Смещение реакции мочи в щелочную сторону наступает при алкалозе рубца, а также при поступлении в организм большого количества натрия и других щелочных элементов. Оно бывает также при циститах, пиелитах в результате брожения мочи и разложения мочевины.

           2.8.1.2. Определение ацетоновых  (кетоновых)  тел в моче. Для определения ацетоновых тел в моче используют качественную пробу с реактивом Лестраде, основанную на реакции нитропруссида натрия с ацетоном и ацетоуксусной кислоты с появлением вишнево-фиолетового окрашивания.    Чувствительность пробы по ацетону и ацетоуксуоной кислоте - около 10 мг%. Реактив

Лестраде готовят путем    смешивания и тщательного растирания в ступке 1 части нитропруссида натрия, по 20 частей серно-кислого аммония и карбоната натрия безводного.

           На фильтровальную бумагу насыпают около 0,1 г реактива и на него наносят 2 - 3 капли мочи. Появление через 30 - 60 с сиреневого или темно-фиолетового окрашивания свидетельствует о наличии в моче кетоновых тел. Слабое окрашивание смеси в розовый цвет с сиреневым оттенком означает, что в моче кетоновых тел не менее 20 мг%, в темно-фиолетовый - свыше 200 мг%.

         Значительная, стойкая кетонурия, обнаруживаемая у большого числа животных, свидетельствует о развитии кетоза. Умеренная, непродолжительная кетонурия может быть при дистонии преджелудков, эндометрите, гнойном мастите, задержании последа.

         2.8.3. Исследование молока. При проведении диспансеризации коров в молоке определяют наличие кетоновых тел, а также используют данные о содержании жира и некоторых других веществ.

         Кетоновые (ацетоновые) тела в молоке определяют непосредственно на ферме или в лаборатории с помощью тех же экспресс-методов, которые применяют для обнаружения кетоновых тел в моче. При наличии кетоновых тел высокой концентрации реактив Лестраде с молоком дает вишнево-розовое окрашивание. Чем больше содержится кетоновых тел в молоке, тем интенсивнее окраска. С молоком здоровых коров качественная проба дает отрицательные результаты. Обнаружение с помощью реактива Лестраде или другой пробы кетоновых тел в молоке указывает на развитие кетоза.

         В молоке здоровых коров общее количество кетоновых тел (ацетон, ацетоуксусная и бета-оксимасляная кислоты) составляет 6-8 мг%.

         В результате параллельных определений кетоновых тел в крови и молоке йодометрическим методом установлена прямая положительная связь между этими показателями. В стадах, где превалирующей патологией обмена веществ у коров является кетоз, во время промежуточной диспансеризации можно исследовать вместо крови молоко. Выраженная кетонолактия с концентрацией кетоновых тел выше 20 мг% отмечается у животных при развитии кетоза.

         2.8.4. Исследование рубцового содержимого. Диагностическое значение имеют рН, уровень молочной кислоты, аммиака, количество инфузорий, их подвижность, видовой состав и другие показатели.

         Для исследования рубцовое содержимое берут утром через 3-4 ч после кормления, с помощью рото-пищеводного зонда и шприца Жанэ.

         Первые порции содержимого рубца с наличием слюны выливают, так как они искажают результаты исследований.

         Полученное содержимое отфильтровывают через 4 слоя марли от кормовых масс, консервируют 6-8 каплями хлороформа или толуола; в случае хранения или длительной транспортировки заливают слоем вазелинового масла (1 мл).

         Для подсчета инфузорий пробу рубцовой жидкости консервируют 10%-ным раствором формалина.

         2.8.4.1. Определение рН. рН рубцовой жидкости определяют рН-метром или индикаторной бумагой, реактивными полосками. Оптимальный рН рубцового содержимого у коров, нетелей составляет 6,5—7,2. Снижение рН до 6,0 и ниже свидетельствует о развитии ацидоза рубца, сдвиг рН выше 7,2 характерен для алкалоза рубца.

           Ацидоз рубца развивается при поедании большого количества кормов, богатых сахарами и крахмалом (свекла, кормовая патока, зерновые злаковые, картофель и другие). Причина алкалоза рубца - поедание большого количества зернобобовых, а также недоброкачественных (подгнивших) кормов и высоких доз мочевины.

          2.8.4.2.  Определение молочной кислоты в рубцовом содержимом проводят методом Гордона и Квасля в модификации А. П. Кротковой, Н. В. Курилова.

          Молочная кислота в содержимом рубца находится в норме в следовых концентрациях (не превышает 0,2 мМоль/л). При избыточном углеводном питании (кормовая, полусахарная свекла более 25 кг в сутки), использовании больших количеств зерновых крахмалистых концентратов содержание молочной кислоты в рубцовой жидкости резко возрастает, вызывая снижение рН рубцовой среды, а позднее - развитие ацидотического состояния в организме. Снижение рН и накопление молочной кислоты в рубцовом содержимом изменяет видовой состав и подвижность инфузорий.

          2.8.4.3.   Количество инфузорий в содержимом рубца определяют в счетной камере с сеткой Горяева.  Метод    подсчета простейших в рубцовой жидкости не отличается от техники, используемой для подсчета лейкоцитов.

           В рубцовом содержимом находится около 100 видов инфузорий, общая их численность варьирует от 200 до 1200 тыс./мл и зависит от состава рациона, вида кормов.

          При использовании травостоя пастбищ, на сбалансированном сено-силосно-концентратном рационе их количество колеблется от 400 до 500 тыс/мл, при одностороннем высококонцентратном, силосном кормлении или при использовании гранулированных кормов – 150-200 тыс./мл.

          Количество инфузорий уменьшается при снижении рН рубцового -содержимого ниже 6,5 или повышении более 7,2.

           2.8.4.4.  Аммиак в рубцовом содержимом определяют микродиффузионным методом Конвея.

           При оптимальном уровне рН (6,5-7,2) уровень аммиака в рубцовом содержимом составляет 6,5-25 мг% с .колебаниями по сезонам года: в зимний период 6,5-20 мг%, в летний, при использовании травы долголетних культурных пастбищ, 20-25 мг%.

           При ацидозе рубца    происходит угнетение    образования аммиака  (распада кормового протеина), его количество снижается до 5-2 мг%, а иногда - до следов.

           При алкалозе рубца, вызванном поступлением карбамида или азотсодержащих солей в больших количествах, когда рН среды превышает 7,2, в содержимом рубца аммиак в первые же часы возрастает до 60-70 мг% и удерживается на высоком уровне в -рубце и крови в течение первых суток О после скармливания.

         2.9. Анализ кормления и содержания животных.

         При выяснении влияния кормления на состояние обмена веществ и здоровья животных необходимо определить уровень и тип кормления, степень удовлетворения потребности в основных элементах питания и биологически активных веществах.

         2.9.1.  Уровень  кормления,  который  определяют  сопоставлением общего количества кормовых единиц   рациона с нормами ВИЖа, может   быть    нормальным, повышенным или сниженным. Сниженный уровень сопутствует развитию остеодистрофии,    повышенный - кетоза. Для  высокого    уровня кормления характерно наличие большого числа животных с признаками ожирения.

          2.9.2.  Структуру рациона  определяют    путем  вычисления процентного содержания каждого вида корма в общем количестве кормовых единиц. Процентное соотношение различных видов  кормов по питательности в общем количестве скормленных за год кормов характеризует тип кормления. К концентратному    типу относят    кормление при расходе 400 г и более концентратов    на 1 кг молока с 4% жира, к полуконцентратному - с расходом 200-300 г, к малоконцентратному – 110-120 г к объемистому - с расходом концентратов до 100 г на 1 кг молока.                       Исходными данными для вычисления структуры потребляемых кормов за год или определенный период служат данные бухгалтерского учета о расходе кормов для различных групп животных, которые есть в каждом хозяйстве.

         2.9.3.  При  анализе  кормления    животных важно  определить содержание в рационах клетчатки, выраженное в    процентах к сухому веществу. Для этого подсчитывают содержание сухого вещества в рационе и количество клетчатки.

         В 1 кг корма содержится сухих веществ (кг): грубых кормов 0,85; зеленых - 0,18; силоса - 0,2; корнеплодов - 0,1-0,12; концентратов - 0,9; зерна злаковых и бобовых - 0,88-0,9.

         В сухом веществе содержится клетчатки (%): сена – 27-33; соломы – 32-46; зеленых кормов – 16-20; силосованных – 22-28; комбикорма 7-10; зерна злаковых – 2- 10; зерна бобовых – 4-7; корнеплодов - 1,0.

Ее количество в рационе можно   определить   по   табличным  данным. Недостаток в рационах клетчатки ведет к нарушению рубцового    пищеварения  и  обмена    веществ,  развитию руменита, ацидоза рубца, кетоза и других болезней, появлению диареи, снижению кислотности молока.

При избытке в рационах клетчатки снижается переваримость питательных веществ корма.

          2.9.4. Для выяснения степени обеспеченности потребности ; животных в основных элементах питания проводят зоотехнический анализ рационов разных групп животных. Контролируемыми показателями являются: сухое вещество, кормовые единицы, переваримый    протеин, кальций,  фосфор,  каротин, сахар, соль поваренная, отношение кальция к фосфору, сахара к протеину. В необходимых случаях подсчитывают содержание в кормах магния, серы, калия, микроэлементов, витаминов Д, Е.

          При анализе рационов необходимо обращать внимание на состав комбикормов, учитывать их рецептуру, фактический набор компонентов, указанных в удостоверении, которое выдается заводом-изготовителем на каждую партию отправляемого корма.

          Путем анализа рационов, сопоставления нормы питательных и других веществ с их содержанием в кормах делают заключение о полноценности и сбалансированности питания.

         2.9.5. Оценивают качество кормов на основании органолептического анализа, результатов химического, микологического, бактериологического и токсикологического исследований. Животным скармливают только доброкачественные корма.

         2.9.5.1.   Качество  сена   (сеянные  бобовые,  злаковые,  смешанные и естественные сенокосы) оценивают по цвету, запаху,  содержанию сухого вещества   (не менее 85%),  наличию ядовитых (не более 1%) и механических примесей. Содержание клетчатки в нем – 27-33%.

         Классность сена определяют по массовой доле сырого протеина в сухом веществе (в зависимости от вида травостоя): 16-11% - 1 класс, 13 - 9% - II и 10-7% - III класс, а также по обменной энергии и кормовым единицам: I класс - 9,2 - 8,9 МДЖ, или 0,68 - 0,64 к. ед.; II - 8,8 - 8,5 МДЖ, или 0,62 - 0,58 к. ед.; III - 8,2 - 7,9 МДЖ, или 0,54 - 0,50 к. ед.

         Испорченные грубые корма (сено, солома, полова и др.) имеют затхлый, плесневелый и гнилостный запах, не свойственный им цвет, к скармливанию такие корма не допускают. Не разрешается скармливать животным сено, содержащее свыше 1 % ядовитых и вредных растений, а также сено и солому, загрязненные илом, песком, землей и другими механическими примесями.

         2.9.5.2.  Силос хорошего качества имеет рН 3,8—4,3, влажность    не более 75%, желто-зеленого или     желтого цвета, запах фруктовый, структура  растений сохранена, без ослизнений. Общее   количество    кислот  в хорошем    силосе  1,9- 2,5%, из них на долю молочной    кислоты приходится более 60%, масляной кислоты нет. Силос среднего качества - бурого цвета, с уксусным запахом. Плохой силос имеет темно-бурый или черный    цвет, едкий аммиачный   запах с оттенком запаха селедки или испорченного сыра. Структура корма разрушена, рН  4,7- 6,0. Соотношение кислот: молочной 29%  и ниже, уксусной более 50%, масляной 21% и более. Испорченный силос    грязно-зеленого цвета,    навозного запаха, ткани растений разложившиеся, рН  5 и выше. Плохой и испорченный силос непригоден для скармливания животным.  Силос с нормальными показателями рН, но с наличием 50%  уксусной кислоты или содержанием масляной кислоты от 10 до 20% (по соотношению кислот) разрешают скармливать животным после раскисления или обработки паром. Такой силос нельзя давать стельным коровам и глубокостельньм нетелям.

        2.9.5.3.  Сенаж хорошего качества имеет фруктовый запах и специфический цвет,    влажность    45-55%,    рН  4,2-5,4. У сенажа среднего качества слабый запах свежеиспеченного хлеба, он  светло-коричневого,  соломенного до желтого,  темно-коричневого  (клевер)  цвета, с влажностью до 55%. Плохой .испорченный сенаж имеет темно-коричневый или черный цвет, неприятный,    навозоподобный    запах, рН 5-8. Такой сенаж    непригоден    для скармливания    животным. Сенаж с влажностью более 55%  оценивается, как силос.  При оценке силоса и сенажа обращают   внимание   также   на загрязненность их землей и пораженность плесенью. Корм, загрязненный землей или пораженный плесенью, удаляют и к скармливанию не допускают.

          2.9.5.4.  Доброкачественный  жом  светло-серого  цвета,  без запаха,  содержит 0,1-0,2%   органических  кислот,  масляная кислота    отсутствует. Кислый жом плохого    качества имеет грязно-серый   цвет,  запах   масляной   кислоты,  рН 3,4-4,4. Соотношение кислот: молочной 20-25%, уксусной 45-50%, масляной до 30-35%. Общее количество кислот от    0,2 до 2,0%.  Абсолютное  количество  масляной  кислоты    достигает 0,5-0,8%.  Его нельзя  скармливать  сухостойным  коровам  и нетелям, лактирующим коровам и другим группам животных.

           2.9.5.5.  Для кормления скота  используют преимущественно свежую барду. Не допускают к скармливанию животным барду, хранившуюся в открытых    ямах длительное    время. Такая барда имеет коричневый цвет и гнилостный запах. Соотношение кислот в ней: молочной до 25%, уксусной свыше 25%, масляной около 50%   и  более. Абсолютное  количество масляной кислоты достигает 0,6%.

          2.9.5.6.Доброкачественные концентрированные корма имеют соответствующий цвет и запах, влажность не более 15%.

          Содержание вредных примесей (смеси ядовитых растений, спорыньи и головни) в фуражном зерне не должно быть более 1%, сорных примесей менее 8%. Не допускаются металлические примеси, стекло. Минеральные примеси (песок, земля, ил) не должны превышать в зернофураже 0,1- 0,2%, в комбикорме, муке и отрубях - 0,8%.

          В зерне, комбикорме и мучнистых кормах не допускается содержание плесени, а также сильно токсичных грибов..

         Запрещается скармливать животным протравленное зерно. В хлопчатниковом жмыхе количество свободного госсипола не должно превышать 0,02%.

         2.9.5.7.   При оценке корнеплодов    обращают внимание на загрязненность    землей, пораженность    гнилью и плесенью. Не   разрешают  скармливать  загнившие,  заплесневелые,  мороженые, загрязненные землей корма.

          2.9.5.8.  В кормах необходимо учитывать содержание вредных  и ядовитых веществ, предельно допустимые количества пестицидов, нитритов, нитратов и др.

 2.10. Зоогигиеническая оценка ферм.

           Во время диспансеризации проводят общую зоогигиеническую оценку ферм, учитывают состояние полов, стойл, боксов, дверей и других конструкций, устройство вентиляций и уровень воздухообмена, отопление, канализацию, способы уборки и удаления навоза, освещение, технологию содержания животных, раздачу кормов, распорядок дня, проверяют параметры температуры, влажности воздуха, содержания в нем аммиака, сероводорода и других газов.

         2.11. Анализ полученных данных.

         При анализе результатов клинического исследования приводят в процентах число животных с болезнями сердца, тахикардией (свыше 80 ударов в минуту), учащенным поверхностным дыханием (свыше 30 в минуту), гипотонией и атонией преджелудков (менее трех сокращений рубца в 2 минуты), увеличением и болезненностью печени, истончением и остео-лизисом последних ребер и хвостовых позвонков, маститами, бурситами, поражениями копытец и другими болезнями.

         Результаты исследования мочи представляют так, чтобы было видно, какой процент исследованных проб в каждой из трех групп содержит ацетоновые тела (кетоновые), белок, низкий рН и др.

         Результаты исследования крови сводят в таблицы с выделением трех групп животных, исчисляют процент проб с отклонениями от нормы исследуемых показателей.

         В результате изучения указанных комплексных исследований животных разделяют на три группы:

        1) клинически здоровые без нарушения обмена веществ;

         2) клинически здоровые животные с показателями, свидетельствующими о наличии нарушений обмена веществ;

         3) клинически больные животные.

         Терапевтический этап диспансеризации включает проведение лечебно-профилактических мероприятий у животных 2 и 3 групп с целью устранения выявленных при исследовании нарушений белкового, углеводного, жирового, витаминного и минерального обмена, а также проводится лечение больных животных.

         Профилактический этап диспансеризации. Используются разработанные наукой и практикой соответствующие рекомендации по профилактике отдельных болезней или их комплекса.




1. Динамический расчет токарно-винторезного станка 16Б04А
2. всасывать впитывать; абсорбировать; поглощатьto bsorb het поглощать теплоCertin chemicls re esily bsorbed into the bloodstrem while others
3. Собівартість і матеріальнотехнічна база підприємства 1 Визначити коефіцієнт фізичного зносу окремих
4.  Общая часть темы 115
5. I. lle Speisen wollen lehnen sein.
6. Тема 9. Профессиональная и организационная адаптация персонала
7. О~ушы д~рігер с~здерді с~з табыны~ ~айсысына жатады Зат есім 6 Сан есімдер ма~насына ~арай нешеге б
8. Тема- Благотворительность в сфере социальной работы Студент- Мулярчик А
9. культурным потенциалом
10. Движение гравитационных подземных вод осуществляется под действием силы тяжести и или градиента давления
11. Тема 6 Мікроекономічна модель підприємства
12. Организовать самостоятельную работу по использованию планов наблюдения для полного описания наблюда
13. Курсовая работа- О повышении эффективности деятельности государственного сектора науки
14. Определение менеджмента
15. GRGE MSTERS 2013 Восьмерка 8Bll Цель игры Данная игра является заказной при это
16. Педагогічне проектування ~ це не тільки діяльність а і процес послідовної зміни станів що характеризуютьс
17. Применение ЭВМ в управлении производством
18. Native Son Essay, Research Paper.html
19. Оценка опасности поражения человека в трехфазных электрических сетях
20.  Приведите аналоги следующих понятий в табличной базе данных- Атрибут- Столбец таблицы